Problemática: La inmunohistoquímica (IHC) es uno de los métodos más utilizados para la selección de pacientes candidatos para las terapias dirigidas contra blancos. Sin embargo, las diferencias en estos procedimientos aumentan la variabilidad intra e interlaboratorios y afectan la reproducibilidad del ensayo. Objetivo(s): Determinar las condiciones óptimas de tinción del anticuerpo monoclonal (mAb) ior EGF / r3 utilizando tejidos fijados en formol e incluidos en parafina. Metodología: La reactividad de los mAbs ior EGF/r3 y el clon 2-18C9 (PharmDxTM, Dako) se comparó en cortes de tejidos normales y en microarreglos tisulares procedentes de tumores de mama, colon y pulmón. La intensidad de la tinción se clasificó como: negativa (0), débil (1+), moderada (2+) e intensa (3+). Resultados y discusión: El bloqueo de las uniones inespecífica, la reanimación antigénica de los tejidos con pronasa y el empleo del sistema de detección polímero conjugado con peroxidasa, entre otros factores, favorecieron la inmunorreactividad con el ior EGF/ r3. Con ambos mAbs se detectó reactividad en la membrana y citoplasma de las células epiteliales de los tejidos normales y neoplásicos. Con ambos mAbs se detectó reactividad en la membrana y citoplasma de las células epiteliales de los tejidos normales y neoplásicos. En la mayoría de los tejidos positivos se observó un reconocimiento ligeramente más intenso con el clon 2-189C, que no afectó la correlación positiva de las intensidades del marcaje entre los dos anticuerpos (p < 0,0001; Prueba de Mantel). Conclusiones: Se desarrolló y estandarizó un procedimiento optimizado para la detección del EGFR con el empleo del mAb ior egf/r3 en muestras de tejido fijadas en formol e incluidas en parafina. El patrón de reconocimiento obtenido con los mAbs ior egf/r3 y el clon 2-18C9 mediante métodos inmunohistoquímicos fue comparable.